Furimazine (фуримазин) - субстрат для NanoLuc

Набор представляет собой систему из 2 реагентов на основе D-люциферина, использующуюся для количественного определения люциферазы светлячка (Firefly luciferase), которая является одним из наиболее чувствительных инструментов для анализа экспрессии генов. Характеристики Данный продукт представлен в виде 2 отдельных реагентов: 1) буфер для анализа (реагент #1), 2) субстрат люциферазы светлячка – Firefly luciferase (реагент #2). Параметр Значение Назначение Детекция люциферазы светлячка (Firefly Luciferase) Принцип Биолюминесценция Анализ Люминометрический

Классический тип носителя для металл-хелатной хроматографии белков. Представляет собой микросферы средним диаметром ок. 100 мкм на основе кросс-сшитой агарозы фармакопейного качества с иммобилизованным комплексом лиганда нитрилотриуксусной кислоты с никелем (NTA-Ni). Предназначен для реализации металл-хелатной хроматографии в FPLC, спин- и батч- форматах. Каталожный номер Фасовка, мл Цена, руб Срок изготовления FLO-911-102-10ML 10 мл носителя 7 800 В наличии FLO-911-102-50ML 50 мл носителя 33 100 В наличии FLO-911-102-250ML 250 мл носителя 142 700 В наличии Характеристики Параметр Значение Тип носителя Агароза Размер микросфер носителя 50-150 мкм Аффинность His-Tag Назначение Специфическое связывание и очистка белков с His-Tag меткой Лиганд NTA Связанный ион Ni2+ Стабильность хелатора Стабилен в буферах с 10 мМ DTT и 1 мМ EDTA Хранения +4 ОС

Носитель AbiFlow 100 Ni-AZUR Agarose — разработка Abisense для очистки белков методом металл-хелатной хроматографии низкого давления. Носитель представляет собой микросферы со средним диметром 100 мкм, полученные путем кросс-сшивания природного полисахарида агарозы фармакопейного качества, с иммобилизованным комплексом тетра-дентантного хелатирующего лиганда с никелем (AZUR-Ni). Предназначен для реализации металл-хелатной хроматографии в FPLC, спин- и батч- форматах. Размер микросфер влияет на скорость потока и выход белка. Каталожный номер Фасовка, мл Цена, руб Срок изготовления FLO-931-102-10ML 10 мл носителя 7 800 В наличии FLO-931-102-50ML 50 мл носителя 33 100 В наличии FLO-931-102-250ML 250 мл носителя 142 700 В наличии Характеристики Параметр Значение Тип носителя Агароза Размер микросфер носителя 50-150 мкм* Аффинность His-Tag Назначение Специфическое связывание и очистка белков с His-Tag меткой Лиганд AZUR: улучшенный тетрадентантный лиганд для His-Tag Связанный ион Ni2+ Стабильность хелатора Стабилен в буферах с 20 мМ DTT и 20 мМ EDTA Хранения +4 ОС

Метод исследования цитотоксичности на основе резазурина базируется на способности живых клеток превращать синий нефлуоресцентный краситель, резазурин, в розовый флуоресцентный, резоруфин, что позволяет определять цитотоксичность клеток колориметрически или флуориметрически. Восстановление резазурина осуществляется широким спектром ферментов клеток (митихондриальными и цитоплазматическими дегидрогеназами, цитохромами и другими). Жизнеспособные клетки непрерывно превращают резазурин в резофурин, увеличивая общую флуоресценцию и цвет среды для культивирования клеток.

AbiFlow 100 СМ-Agarose — слабый катионобменник на основе кросс-сшитой 4% агарозы фармакопейного качества и иммобилизованных на нее карбоксиметильных (СМ) остатков – слабого ионообменного лиганда. Отлично подходит для быстрой и эффективной очистки белков методом ион-обменной хроматографии, которую проводят, как правило, в растворах с низкой ионной силой, а элюцию связавшихся белковых молекул – в возрастающем солевом градиенте. Носитель имеет высокую пористость, что обеспечивает эффективное ионное взаимодействие с белками. Сшитая агароза физически стабильна, что делает ее пригодной для процессов очистки при низком давлении со скоростью потока до 5 мл/мин (оптимально 0,5–2 мл/мин). Плотность иммобилизованных СМ групп превышает 30 мкмоль/мл. AbiFlow 100 DEAE-Agarose поставляется в виде 50% суспензии, т.е. 1 мл соответствует 500 мкл влажной смолы. Суспензия содержит 20% этанола в качестве консерванта. AbiFlow 100 СМ-Agarose стабильна в диапазоне pH 2–14, что упрощает разработку процедуры «очистки на месте» (CIP).

Данная субстратная система состоит из 2 реагентов и преимущественно используется в тестах иммуноферментного анализа (ИФА, EIA, ELISA) для определения активности пероксидазы хрена (HRP). Готовый субстрат представляет собой раствор 3,3’,5,5’-тетраметилбензидина в слабокислом буфере. Непрореагировавший субстрат должен быть бесцветным или иметь очень светло-жёлтый цвет. При взаимодействии субстратной системы с пероксидазой хрена образуется растворимый продукт реакции синего цвета с максимумом поглощения при 652 нм.

Лизирующий буфер для красных кровяных клеток наиболее часто используется для лизиса эритроцитов периферической крови человека и мышей, а также суспензий мышиных гематопоэтических тканей (например, спленоциты селезенки). Данный буфер содержит хлорид аммония, благодаря чему при правильном использовании реагента лизируются преимущественно красные кровяные клетки с минимальным воздействием на лимфоциты. Ядерные эритроциты могут не разрушиться под воздействием хлорида аммония.

Система из 2 реагентов на основе бицинхониновой кислоты (БХК) и кристаллогидрата сульфата меди, которая используется для количественного колориметрического определения количества белка в образце.

Трипановый синий является одним из наиболее часто используемых красителей для определения количества жизнеспособных клеток. Метод окрашивания трипановым синим основан на том, что жизнеспособные клетки с целостной клеточной мембраной не поглощают данный краситель. Нежизнеспособные клетки с повреждённой мембраной поглощают трипановый синий и их ядра окрашиваются в тёмный цвет. Также окрашивание трипановым синим облегчает визуализацию морфологии клеток.

Лекарственные препараты могут содержать пирогены, источниками которых могут являться бактерии, вирусы, грибы, также пирогены могут быть побочными продуктами производственного процесса. Контаминация лекарственных препаратов пирогенными веществами является серьезной угрозой для здоровья пациентов и может приводить к развитию лихорадки и, в конечном итоге, может вызвать шок и смерть. В настоящее время для определения содержания пирогенных веществ (бактериальных эндотоксинов и веществ неэндотоксиновой природы) используется анализ «Пирогенность», проводимый на кроликах, который неточен и наносит вред животным. Тест на активацию моноцитов (MAT) обладает более высокой чувствительностью и не требует использования животных.

Набор предназначен для выделения и очистки ДНК из следующих образцов: 1. Листья, хвоя, тычинки, зелёные части растений 2. Корни, стебли, кора 3. Плоды, ягоды, семена 4. Мхи, лишайники 5. Одноклеточные водоросли

В основе протокола лежит модифицированный метод щелочного лизиса бактериальной культуры без предварительного осаждения бактерий с последующим селективным связыванием ДНК из осветленного лизата на силиконизированной мембране колонки. Технология позволяет ускорить процесс выделения за счет быстрого лизиса напрямую из биомассы с обработкой РНКазой А лизата и дальнейшего центрифугирования. Преимущества набора: Выход до 10 мкг из 0,6 мл бактериальной культуры Показатели А260/280 = 1,80±0,05, А260/230 ≥ 2,1 Проверено, что плазмидная ДНК пригодна для реакции рестрикции, трансформации, секвенирования, ПЦР

 Преимущества набора: • ДНК из любых реакционных смесей, фрагменты длины от 70 до 20000 п. о. • Показатели А260/280 = 1,80±0,05, А260/230 ≥ 2,0 • Выделенный ПЦР-продукт пригоден для проведения лигирования, рестрикции, трансформации, секвенирования, ПЦР.

Полимер обеспечивает однонуклеотидное разделение фрагментов реакции секвенирования ДНК по Сенгеру в диапазоне от 20 до 1000 нуклеотидов в составе генетических анализаторов, работающих на принципе метода капиллярного гель-электрофореза, например, Нанофор 05

Смесь дНТФ представляет собой водный раствор четырех высокоочищенных ,2’-дезоксинуклеозид-5’-трифосфатов (дАТФ, дТТФ, дГТФ, дЦТФ) в эквимолярной концентрации.

Фьюжн ДНК-полимераза является рекомбинантным полипептидом, состоящим из слитых термостабильной ДНК-полимеразы Pyrococcus furiosus (Pfu) и ДНК- связывающего белка термофильных архей вида Sulfolobus solfataricus (Sso7d). Белок Sso7d связывается с малой бороздкой двухцепочечной ДНК и дополнительно стабилизирует комплекс полимеразы с матрицей. Благодаря этому Фьюжн ДНК-полимераза, обладает повышенной процессивностью, точностью синтеза, скоростью амплификации фрагментов и повышенной устойчивостью к ингибиторам ПЦР по сравнению с нативной Pfu ДНК- полимеразой [1]. Фьюжн ДНК-полимераза обладает 5’→3’ полимеразной активностью, 3’→5’ экзонуклеазной активностью и синтезирует продукты с тупыми концами. Фьюжн ДНК-полимераза является хорошим выбором для рутинного клонирования и может использоваться для получения методом ПЦР длинных или сложных ампликонов. Примеры использования Фьюжн ДНК-полимеразы представлены в конце описания. Фьюжн ДНК-полимераза выделена из штамма E.coli, содержащего плазмиду с клонированным фрагментом ДНК, состоящим из слитых генов термостабильной ДНК-полимеразы Pyrococcus furiosus (Pfu) и ДНК-связывающего белка Sulfolobus solfataricus (Sso7d). Одна единица активности соответствует количеству фермента, необходимому для включения 10 нмолей dNTP в кислотонерастворимую фракцию ДНК за 30 мин при 74°С.